Robert G. Sherding, DVM, DACVIM

Giardia duodenalis (cunoscută și sub numele de G. intestinalis, G. lamblia) este un parazit protozoar flagelat în formă de pară, binucleat, care infectează intestinul subțire, afectează absorbția mucoasei și provoacă diaree.

giardia

Grădină

Giardia duodenalis (cunoscută și sub numele de G. intestinalis, G. lamblia) este un parazit protozoar flagelat în formă de pară, binucleat, care infectează intestinul subțire, afectează absorbția mucoasei și provoacă diaree. Există două forme: trofozoizii mobili care locuiesc în intestinul subțire și chisturile infecțioase nemotile care trec cu fecalele în mediul în care pot infecta noi gazde.

Numeroasele specii și tulpini de Giardia sunt grupate după genotip în 7 „ansambluri”, notate cu literele de la A la G. Câinii și pisicile pot fi infectate fie de genotipuri specifice gazdei (C și D la câini; F la pisici), fie zoonotice genotipuri (A și B) care infectează oamenii (Vasilopulos 2007; Thompson, 2008; Payne 2009; Covacin 2011).

Giardia are o distribuție la nivel mondial. Prevalența generală la majoritatea populațiilor de câini și pisici este de 1% până la 5%, dar este mai mare (10-20%) la animalele diareice. Prevalența este cea mai ridicată la animalele tinere și la animalele închise împreună în condiții de aglomerare (de exemplu, canise, adăposturi, adăposturi, magazine pentru animale de companie, fabrici de pui) (Carlin, 2006; Payne, 2009). Ratele de infecție la animalele adăpostite în grup se pot apropia de 100%.

Ciclu de viață

Giardia are un ciclu de viață direct și transmiterea este feco-orală. Sursa obișnuită de infecție este ingestia de alimente sau apă contaminată cu chisturi. Chisturile Giardia sunt stabile din punct de vedere al mediului și sunt inactive, dar la ingestia de către o gazdă excistă în duoden producând doi trofozoizi din fiecare chist. Trofozoizii mobili se atașează la suprafața marginii periei epiteliului mucoasei cu ajutorul discurilor de adeziune în formă de cupă ventrală sau înoată liber în stratul de mucus adiacent. Trofozoizii locuiesc în principal în duoden la câine și jejun și ileon la pisică. Semnele clinice se dezvoltă după o perioadă de incubație în medie de 7 zile. Pe măsură ce trofozoizii Giardia trec în colon se transformă în chisturi infecțioase, care sunt cea mai tipică formă din fecale. Excreția chistului începe la 5 până la 16 zile după infecție. Trofozoizii se găsesc ocazional în fecalele cu diaree severă.

Animalele sălbatice sunt rezervoare potențiale, iar apa din cursurile și iazurile contaminate poate fi o sursă de infecție. În condiții umede și reci, chisturile Giardia pot rămâne infecțioase luni de zile și sunt rezistente la mulți dezinfectanți. Chisturile de pe pelerină pot cauza autoinfecție în timpul îngrijirii.

Semne clinice

La majoritatea animalelor, Giardia provoacă leziuni enterocite relativ ușoare, astfel încât majoritatea infecțiilor sunt asimptomatice, în special la animalele mature sănătoase. Prezența și severitatea semnelor clinice sunt determinate de agent (virulența dozei și tulpinii), de gazdă (vârstă, stres, nutriție și stare imunitară) și de mediu (condiții insalubre aglomerate) (Payne, 2009). Giardioza aparentă din punct de vedere clinic apare cel mai frecvent la câinii și pisicile tinere și se caracterizează prin malabsorbție intestinală cu diaree, steatoree și scădere în greutate cu miros urât, luminos, apos sau „plăcintă de vacă”. Diareea mucoidă se observă ocazional la pisici. Diareea Giardia poate fi acută sau cronică, intermitentă sau continuă și autolimitată sau persistentă. Severitatea infecției cu Giardia este înrăutățită de infecțiile concomitente virale, bacteriene, protozoice sau cu helminți ale intestinelor. Corticosteroizii pot duce la recurența infecției la animalele „recuperate”. Giardia nu provoacă de obicei anorexie, vărsături, sângerări gastrointestinale sau febră.

Diagnostic

Giardiaza trebuie luată în considerare la orice câine sau pisică cu diaree inexplicabilă a intestinului subțire, în special la animalele tinere și adăpostite în grup. Diagnosticul depinde de testele fecale pentru detectarea antigenului Giardia, a chisturilor sau a trofozoizilor. PCR și secvențierea pot fi utilizate pentru a genotipa Giardia (Covacin 2011).

Imunotesturile fecale pentru antigenul Giardia includ testul SNAP Giardia (IDEXX) în birou și testul ELISA la microplacă (ProSpecT/Giardia, Remel), oferit de laboratoarele comerciale. Au fost raportate rezultate contradictorii în ceea ce privește sensibilitatea și specificitatea testelor ELISA SNAP și microplacă pentru Giardia coproantigen (Mekaru 2007, Rimhanen-Finne 2007, Geurden 2008, Rishniw 2010). Testul SNAP poate fi mai puțin sensibil, dar acest lucru este compensat de comoditate, ușurință în utilizare și costuri mai mici.

Chisturile Giardia (ovale; 8-12 μm x 7-10 μm) sunt prezente în fecale mult mai consecvent decât trofozoizii mobili (în formă de pară; 12-17 μm x 7-10 μm x 2-4 μm). Chisturile Giardia nu sunt de obicei detectate prin soluții standard de flotație, deci centrifugarea-flotația cu sulfat de zinc este metoda preferată pentru recuperarea chisturilor Giardia din fecale (Dryden, 2006). Pentru această procedură, 2 g de fecale sunt amestecate cu 15 ml de soluție de sulfat de zinc la 33% (1,18 cu greutate specifică) și strecurate, apoi amestecul este centrifugat și o picătură din stratul de suprafață (menisc) este transferată într-o lamă de microscop și examinată . Modelul de excreție a chistului în fecale poate fi intermitent, astfel încât un singur specimen fecal poate trece cu vederea diagnosticul în unele cazuri. Pentru a crește sensibilitatea și a maximiza șansele de detectare a chisturilor Giardia, se recomandă examinarea a cel puțin 3 probe de fecale proaspete în decurs de 3 până la 5 zile.

Cea mai sensibilă și specifică tehnică pentru detectarea chisturilor Giardia în fecale este testul direct de imunofluorescență (IFA; MeriFluor; Meridian Diagnostics), care este considerat a fi „etalonul de aur” pentru diagnosticul Giardiei la câini și pisici (Mekaru 2007; Rimhanen - Fenne 2007; Geurden 2008; Rishniw 2010). IFA este disponibil numai prin laboratoare de referință care au microscopie fluorescentă.

Examinarea frotiurilor fecale pentru trofozoizi este metoda cea mai puțin fiabilă pentru diagnosticarea Giardiei. Trofozoizii motili Giardia pot fi ocazional identificați în monturile umede de fecale diareice proaspete suspendate în soluție salină. Trofozoizii Giardia se mișcă într-o mișcare care se prăbușește sau „se încadrează”. O picătură de iod Lugol poate fi adăugată pentru a ucide și pata trofozoizii, care seamănă cu un aspect de „față de maimuță” format din cei doi nuclei, axonemele și corpul median. Trofozoizii se găsesc mai ușor la specimenele duodenale (aspirații endoscopici, spălături, perii sau frotiuri de amprentă a biopsiei mucoasei). Prelevarea de probe duodenale nu este practică ca test de diagnostic de rutină pentru Giardia, dar ar putea fi adecvată la pacienții supuși gastroduodenoscopiei din alte motive.

Niciunul dintre testele de diagnostic pentru Giardia nu este 100% fiabil și unele studii arată o discordanță considerabilă între testele care detectează antigenul fecal sau chisturile (Geurden 2008; Rishniw 2010). De asemenea, prezența Giardiei poate fi mascată temporar de bariu, antibiotice, antiacide, antidiareice, laxative și clisme. Șansele de detectare a Giardiei sunt îmbunătățite atunci când testarea antigenului fecal (de exemplu, SNAP sau ELISA) este combinată cu centrifugare-flotație cu sulfat de zinc (sensibilitate combinată de 98%) și atunci când sunt analizate mai multe specimene fecale. Indiferent, unele infecții cu Giardia scapă de detectare și examinările fecale negative nu exclud un diagnostic de Giardia. Din acest motiv, un studiu de răspuns terapeutic al fenbendazolului (Panacur) poate fi adecvat atunci când diagnosticul este negativ și se suspectează giardia „ocultă”.

Tratament

Cele mai sigure și mai eficiente tratamente pentru Giardia sunt fenbendazolul (Panacur; 50 mg/kg PO q24hr timp de 3 până la 5 zile) și febantel-pirantel-praziquantel (Drontal Plus; câini - 25-35 mg/kg PO q24h timp de 3 până la 5 zile pisici - 50 mg/kg PO q24h timp de 5 zile) (Zajac, 1998; Barr, 1994; Barr, 1998; Payne, 2002; Montoya, 2008; Bowman 2009). Fenbendazolul este un benzimidazol care perturbă absorbția glucozei și metabolismul energetic de către trofozoizii Giardia. Febantel este metabolizat în fenbendazol și oxfendazol.

Metronidazolul (25 mg/kg PO q12h timp de 7 zile) este de obicei eficient, dar până la o treime din infecții pot fi rezistente la metronidazol. Efectele secundare ale metronidazolului pot include anorexie, vărsături și neurotoxicitate reversibilă (slăbiciune, ataxie, dezorientare, convulsii și orbire). Pisicile tolerează mai bine o formulare lichidă de benzoat de metronidazol decât tabletele USP cu metronidazol cu ​​gust amar (Scorza 2004). Albendazolul este eficient (Barr, 1993), dar nu este recomandat deoarece a fost asociat cu toxicitate severă a măduvei osoase. Suspensia de furazolidonă și chinicrina au fost, de asemenea, utilizate pentru tratamentul Giardiei, dar nu sunt recomandate deoarece sunt mai puțin eficiente decât alte medicamente și au o incidență ridicată a efectelor secundare (anorexie, letargie, vărsături).

Prevenirea

Reexpunerea și reapariția infecției sunt adesea confundate cu eșecul de a răspunde la tratament, în special la grupurile de animale închise împreună. Chisturile rămase în mediul înconjurător și pe parul animalelor tratate pot fi o sursă de reinfecție. Măsurile de control ar trebui să includă (1) tratamentul tuturor animalelor de contact care sunt adăpostite împreună; (2) curățarea și decontaminarea mediului, inclusiv dezinfectarea cu amoniu trimestrial (Roccal) și (3) scăldatul pentru curățarea chisturilor de pe parul de păr.

Este disponibil un vaccin adjuvant care conține trofozoizi Giardia uciși (GiardiaVax; FortDodge), dar nu este recomandat. Nu s-a dovedit că vindecă sau previne infecția și nu diminuează în mod fiabil vărsarea chistului (Stein 2003; Anderson, 2004).

Transmiterea zoonotică a Giardiei de la animalele de companie la oameni este posibilă, dar este considerată mai puțin frecventă. Sondajele au arătat că unii câini și pisici din S.U.A. adăpostește genotipurile zoonotice ale Giardiei (A și B) și că unele dintre aceste animale sunt vărsători asimptomatici (Vasilopulos 2007; Covacin 2011).

Infecția cu Tritrichomonas la pisici

Fătul Tritrichomonas a apărut ca o cauză importantă a diareei infecțioase a intestinului gros și a colitei cronice la pisici (Gookin 1999, Gookin 2001, Levy, 2003, Bell 2010). Tricomonadele sunt protozoare flagelate în formă de pară, cu o membrană ondulantă caracteristică de-a lungul corpului. Au dimensiuni similare cu Giardia, dar le lipsește un stadiu de chist și se transmit direct între gazde sub formă de trofozoizi. Condițiile umede, calde, anaerobe sunt optime pentru tricomonade. În plus față de colonizarea colonului și ileonului distal la pisici, T. fetus provoacă infecție venerică la bovine. Prevalența infecției cu T. făt este cea mai mare la pisicile tinere găzduite dens în gâtere și adăposturi aglomerate. Într-un studiu al pisicilor de rasă pură, infecția a fost identificată la 31% din 117 pisici din 89 de pisici (Gookin, 2004).

Semne clinice

Fătul Tritrichomonas cauzează colită limfoplasmocitică și neutrofilă ușoară până la severă asociată cu creșterea și scăderea diareei intestinului gros, care este de obicei semiformată sau „plăcintă de vacă” în consistență și miros urât (Gookin 1999). Diareea conține uneori sânge proaspăt sau mucus. Pisicuțele grav afectate dezvoltă uneori iritații anale dureroase cu driblingul fecalelor sau prolaps rectal. Diareea se îmbunătățește adesea tranzitoriu ca răspuns la antibiotice. Pisicile afectate rămân, în general, sănătoase și în stare bună. Diareea este adesea agravată de infecții enterice concurente sau paraziți, în special Giardia și Cryptosporidium (Gookin 2004).

Diagnostic

Diagnosticul infecției fetale cu Tritrichomonas poate fi confirmat prin microscopie fecală directă, cultură fecală, test de reacție în lanț polimerază fecală (PCR) sau biopsie a mucoasei colonice. Testarea este cea mai fiabilă la pisicile care au renunțat la antibiotice timp de 2 săptămâni sau mai mult. Acest lucru se datorează faptului că antibioticele pot reduce temporar numărul de T. fetus și pot provoca rezultate fals negative ale testelor.

Trofozoizii motili T. fătul poate fi identificat în frotiuri umede proaspete de fecale diareice luate direct din rect în aproximativ 14% din cazuri. O picătură de fecale amestecată cu o picătură de soluție salină este acoperită și examinată la lumină slabă la o mărire de 200X până la 400X. Probabilitatea de detectare a trofozoizilor este mai mică la fecalele formate sau uscate și la pisicile tratate recent cu antibiotice. Tricomonadele, care sunt asemănătoare ca mărime și formă cu Giardia, sunt identificate prin membrana lor ondulantă distinctivă și motilitatea rapidă, sacadată, „jitterbug” în comparație cu motilitatea „frunzelor care cad” a Giardiei.

Cultura fecală protozoară este mai sensibilă decât microscopia pentru diagnosticul T. fetus (Gookin, 2003). Cultura necesită 0,05 g (mărimea bobului de orez) de fecale proaspăt golite inoculate în medii protozoale disponibile în comerț (Feline In Pouch TF ™; Diagnostic Biomed) și incubate la 37 ° C timp de 48 de ore sau la temperatura camerei (25 ° C) timp de până la 12 zile. Punga trebuie examinată zilnic cu un microscop pentru a evita pierderea unui rezultat pozitiv. Sensibilitatea (limita de detecție) este de 1000 sau mai multe tricomonade pe probă. Folosiți cea mai umedă parte a scaunului pentru a obține tricomonade viabile. Dacă scaunul gol este uscat sau contaminat cu așternut, colectați un specimen rectal cu buclă sau tampon. Mucusul rectal pe tampon este suficient pentru cultură, dar nu și PCR. Un inocul excesiv de mare de fecale în pungă poate favoriza creșterea excesivă a bacteriilor, ceea ce afectează performanța sistemului de cultură. Înnorarea mediului lichid și formarea bulelor de gaz sunt indicative ale unei creșteri bacteriene inacceptabile în cultură. Nu puneți la frigider specimenele deoarece temperaturile sub 60o F ucid rapid T. făt.

Testul PCR fecal este cel mai precis test (sensibilitate și specificitate ridicată) pentru detectarea T. fetus (Gookin 2002). Fecalele pentru PCR (180 până la 220 mg) nu trebuie să aibă așternut și se păstrează cel mai bine în 3 până la 5 ml de alcool izopropilic pentru frecare, pentru transportul la temperatura camerei. Limita de sensibilitate a PCR este de 10 tricomonade la 200 mg probă fecală.

În biopsiile mucoasei colonice de la pisici infectate, trichomonadele sunt uneori identificate în mucusul superficial și în criptele mucoasei, însoțite de un infiltrat de limfocite, celule plasmatice și neutrofile (Yaeger, 2005). Hibridizarea in situ a fluorescenței (FISH) poate identifica și T. fetus.

Tratament

Tratamentul tricomoniazei feline este adesea nereușit. La pisicile netratate, prognosticul pe termen lung se bazează pe constatarea că diareea se rezolvă spontan la 88% dintre pisicile infectate în decurs de 2 ani (mediană, 9 luni; interval de 5 luni până la 2 ani) (Foster, 2004). Cu toate acestea, infecția subclinică persistă ani de zile la peste jumătate din pisici după rezolvarea diareei (mediană, 3 ani; interval de 2 până la 5 ani (Foster, 2004). Unele pisici aparent rămân infectate pe viață. Boala clinică poate fi prelungită la pisici trăirea cu condiții dense de adăpostire, posibil stres atribuibil. Tratamentul cu modificări ale dietei și antibiotice convenționale poate prelungi semnele clinice și întârzia rezolvarea spontană la unele pisici.

Fătul Tritrichomonas este rezistent la majoritatea antibioticelor și este extrem de dificil de eradicat (Gookin 2001). Au fost evaluate numeroase antibiotice. Unele antibiotice reduc numărul de organisme și îmbunătățesc diareea fără a elimina infecția, astfel încât diareea recidivează ori de câte ori antibioticele sunt oprite. Diareea este de obicei refractară la corticosteroizi.

Cel mai de succes tratament pentru eliminarea T. fătului este ronidazolul (30 mg/kg PO, o dată sau de două ori pe zi timp de 14 zile). Ronidazolul este un nitroimidazol legat de metronidazol. (Gookin, 2006). Efectele secundare la unele pisici includ letargie, scăderea poftei de mâncare și neurotoxicitate (agitație, tremurături, slăbiciune, hiperaestezie, ataxie, convulsii) (Rosado, 2007). Pisicile cu semne neurotoxice se îmbunătățesc, de obicei, atunci când medicamentul este oprit, dar recuperarea poate dura 1 până la 4 săptămâni. Ronidazolul nu trebuie utilizat la reginele însărcinate și care alăptează sau la pisicile foarte tinere. Ronidazolul nu este aprobat pentru uz veterinar sau uman, dar unele farmacii compun ronidazol de calitate chimică pentru uz veterinar. Datorită gustului său amar, ronidazolul compus în capsule de gel este mai bine tolerat decât suspensia aromată. Când prescrieți ronidazol, obțineți consimțământul informat și instruiți-i pe proprietari să poarte mănuși de protecție la manipularea acestuia.

Ronidazolul nu este eficient în fiecare caz. Recidiva infecției poate apărea până la 20 de săptămâni după terminarea tratamentului; astfel, se recomandă testarea PCR de urmărire pentru a confirma că infecția este eliminată la 1-2 săptămâni după finalizarea tratamentului și din nou după 20 de săptămâni. O vindecare poate fi dovedită numai prin teste PCR negative repetate timp de 20 de săptămâni sau mai mult după tratament.

Pisicile infectate ar trebui izolate în timpul tratamentului pentru a preveni reinfecția, care este o problemă obișnuită în catter. Pentru a preveni autoinfecția în timpul tratamentului, așternutul trebuie înlocuit frecvent și cutia dezinfectată. În catterele infectate, controlul T. fetus necesită teste repetate pentru a identifica pisicile infectate, care pot fi apoi izolate și tratate. Alte măsuri includ reducerea densității locuințelor, reducerea stresului, îmbunătățirea dietei și tratarea infecțiilor concomitente, cum ar fi Giardia sau Cryptosporidium. Infecția concomitentă cu Giardia este frecventă, astfel încât pisicile infectate cu T. fetus trebuie testate în mod curent pentru Giardia și chiar tratate empiric cu fenbendazol pentru a elimina co-infecțiile „oculte” cu Giardia și helminți (Gookin, 2004). La pisici, pisicile mai în vârstă pot fi purtători asimptomatici și pot infecta pisicile mai tinere.

Referințe

Anderson KA, și colab: Can Vet J 2004; 45: 924-930

Barr SC, și colab.: Am J Vet Res 1993: 54: 926-928

Barr SC, și colab.: Am J Vet Res 1994; 55: 988-990

Barr SC, și colab.: Am J Vet Res 1998; 59: 1134-1136

Bell ET, și colab: J Feline Med și Surgery 2010; 12: 889-898

Bowman DD, și colab: Parasitol Res 2009; 105: S125-S134

Carlin EP, și colab: Vet Ther 2006; 7: 199-206

Covacin C, și colab.: Vet Parasitol 2011; 177: 28-32

Dryden MW, și colab.: Vet Ther 2006; 7: 4-14

Foster DM și colab.: J Am Vet Med Assoc 2004; 225: 888-892

Gookin JL, și colab: J Am Vet Med Assoc 1999; 215: 1450-1454

Gookin JL, și colab: Am J Vet Res 2001; 62: 1690

Gookin JL și colab: J Clin Microbiol 2002; 40: 4126

Gookin JL, și colab: J Am Vet Med Assoc 2003; 222: 1376-1379

Gookin JL, și colab: J Clin Microbiol 2004; 42: 2707-2710

Gookin JL, și colab: J Vet Intern Med 2006; 20: 536-543

Guerden T, și colab.: Vet Parasitol 2008; 157: 14-20

Levy MG, și colab: J Parasitol 2003; 89: 99

Mekaru SR, și colab: J Vet Intern Med 2007; 21: 959-965

Montoya A, și colab: Parasitol Res 2008; 103: 1141-1144

Payne PA, și colab: J Am Vet Med Assoc 2002; 220: 330-333

Payne PA, și colab: Vet Clin America de Nord 2009; 39: 993-1007

Rimhanen-Fenne R, și colab.: Vet Parasitol 2007; 145: 345-348

Rishniw M, și colab: J Vet Intern Med 2010; 24: 293-297

Rosado TW, și colab: J Vet Intern Med 2007; 21: 328

Scorza AV, și colab: J Feline Med și Surgery 2004; 6: 157-160

Stein, JE, și colab: J Am Vet Med Assoc 2003; 222: 1548-1551

Thompson, RCA și colab.: Vet J 2008; 177: 18-25

Vailopoulos RJ, și colab: J Vet Intern Med 2007; 21: 352

Yaeger MJ și colab.: Vet Pathol 2005; 42, 797

Zajac AM, și colab.: Am J Vet Res 1998; 59: 61-63